6800-18 - акватическая камера для LI-6800, LI-COR


6800-18 Акватическая камера используется для измерения установившейся (steady‑state) ассимиляции углерода и флуоресценции хлорофилла у водных образцов – суспензий водорослей, кораллов, макроалг и морских трав.


Системы для водных измерений Оборудования для измерения газообмена растений
LI-COR Environmental

6800-18 Акватическая камера

6800-18 Акватическая камера используется для измерения установившейся (steady‑state) ассимиляции углерода и флуоресценции хлорофилла у водных образцов – суспензий водорослей, кораллов, макроалг и морских трав. Камера применяется в составе портативной системы LI‑6800 – предпочтительной системы для измерения фотосинтеза у наземных растений, и теперь расширяет возможности прибора для исследований водных объектов.

Цитата:
“Я был абсолютно поражён этими данными.”
— Dr. Phillip Davey


Применение и примеры

  • Публикация:
    Недавняя статья в журнале Algal Research описывает прямые измерения углеродного усвоения и флуоресценции хлорофилла с использованием 6800‑18 Акватической камеры.

  • Примеры применения, упомянутые экспертами:

    • Измерение поглощения CO₂ мхом (пример в 40:14 видеоматериале).
    • Измерение световой реакции кораллов (пример в 44:30).
    • Измерение фотосинтетической активности морской водоросли Fucus sp. на побережье (пример в 48:45).

Dr. Tracy Lawson, Beta‑тестер камеры:
“Эта камера имеет множество возможностей, помимо работы с водорослями. Мы с волнением планируем изучать кораллы, мхи, лишайники и другие организмы, которые находятся в растворе или требуют постоянного увлажнения.”


Принцип работы

Открытая система с непрерывным потоком

  • Концепция:
    В отличие от типичных методов, основанных на измерении изменения концентрации кислорода с течением времени, LI‑6800 представляет собой открытую систему с непрерывным потоком, в которой концентрации CO₂ и O₂ остаются постоянными в течение измерения.

Дифференциальное измерение CO₂

  • Методика:

    • Камера определяет скорость ассимиляции углерода на основе массового баланса воздушного потока до и после прохождения через жидкостной образец.
    • Концентрации CO₂ и водяного пара измеряются парой высокоточных инфракрасных газоанализаторов (IRGA).
    • Разница между входящим и исходящим воздухом отражает биологическую активность образца.
  • Массовый баланс:
    Это позволяет рассчитать поток CO₂ между жидким образцом и воздушным пространством камеры, который, при нормализации к плотности клеток, массе или содержанию хлорофилла, выражается в µmol CO₂ (cell⁻¹·s⁻¹, mg⁻¹·s⁻¹ или µmol CO₂ µg⁻¹·s⁻¹).

Минимизация влияния водяного пара

  • Метод:
    • Разница в концентрациях водяного пара между входящим и исходящим потоками минимизируется с помощью патентованного решения.
    • В расчёт ассимиляции включаются измеренные концентрации водяного пара для корректировки объемного разбавления.

Аэрация и стабильные условия

  • Аэрация:

    • Схема аэрации обеспечивает быструю эквилибровку газовой фазы и CO₂ в растворе.
    • Для ускорения гидратации CO₂ и его превращения в бикарбонат в среде добавляется карбоническая ангиокиназа (CA).
  • Стабильные условия:

    • Концентрация CO₂ в воздушном пространстве поддерживается стабильно благодаря системе миксера/скруббера, что предотвращает накопление CO₂ или O₂ в образце.
    • Освещение в камере регулируется по общему световому потоку, а также по доле синего, красного и дальнего красного света.
    • Температура образца контролируется с помощью внешнего циркуляционного водяного бака (установки возможны от >0 °C до 50 °C).

Измерение флуоресценции хлорофилла

  • Совместное измерение:
    6800‑18 позволяет одновременно измерять обмен CO₂ и флуоресценцию методом импульсной амплитудной модуляции (PAM).

    • CO₂ обмен дает информацию о фотосинтетическом взаимодействии водорослей с растворённым неорганическим углеродом.
    • Флуоресценция хлорофилла – индикатор световых реакций фотосинтеза.
  • Преимущество комбинированного измерения:
    Совместный анализ позволяет получить более полное представление о фотохимии водных организмов, чем если бы использовать только один из методов.


Примеры экспериментальных данных

Фотосинтетическая реакция на изменение интенсивности света

  • Измерения на водорослях (Chlorella):
    • При измерениях проводились два режима: при 21% кислорода (воздух) и при 0,5% кислорода (воздух из баллона с 0,5%-ным содержанием кислорода).
    • CO₂ вход в камеру поддерживался на уровне 400 µmol mol⁻¹.
    • Температура в камере стабилизировалась на 25 °C с использованием внешнего водяного бака.
    • Измерения проводились в солёной среде (17 ppt).

График (Figure 3):
Показывает зависимость чистой ассимиляции углерода от интенсивности света. Твердые символы – режим 0,5% кислорода; открытые – режим 21% кислорода.

Флуоресцентные измерения и фотопроизводительность

  • Фигуры 4 и 5:
    • Фигура 4 демонстрирует зависимость квантовой эффективности фотосистемы II (ΦPSII) и доли закрытых реакционных центров (1‑qL) от интенсивности света.
    • Фигура 5 иллюстрирует уровень нефотохимического квенчинга (NPQ), показывая, как активная регуляция NPQ изменяется при снижении концентрации кислорода.

Измерение фотосинтетической реакции на изменение концентрации CO₂

  • Измерения на Monoraphidium:
    • При неизменном содержании кислорода и освещении 700 µmol м⁻²·с⁻¹ проводилось изменение установок CO₂.
    • Камерная температура поддерживалась на 25 °C.
    • Буферный раствор (pH 7.0, TRIS) использовался для измерений в пресной воде.

Фигура 6:
Показывает нелинейную зависимость чистой ассимиляции углерода от концентрации CO₂ в образце.

Фигура 7:
Отображает зависимость квантовой эффективности фотосистемы II (ΦPSII) и доли закрытых реакционных центров (1‑qL) от равновесной концентрации CO₂ (pCO₂) в камере, а также степень нефотохимического квенчинга (NPQ).

Измерения с адаптером для крупногабаритных образцов

  • Измерения Sargassum:
    С использованием комплекта адаптера (9968‑338) камера может измерять фотосинтетический ответ образцов, которые должны оставаться в увлажнённом воздухе (например, кораллы).
    • Фигура 8 демонстрирует зависимость фотосинтетической ассимиляции, ΦPSII и NPQ от интенсивности света (Q) для Sargassum.

Заказ и комплектация

Варианты заказа акватической камеры

  • LI‑6800AQ Portable Photosynthesis System with Aquatic Chamber:
    Полный комплект для преимущественно водных исследований, включающий:

    • Систему LI‑6800 (консоль, сенсорная голова, кабельный комплект)
    • Флуориметр 6800‑01A
    • 6800‑18 Акватическую камеру
    • Дополнительные аксессуары: комплект запасных частей, источник питания, две батареи, силикагель, сода известь и баллоны CO₂.
  • 6800FAQ Aquatic Chamber with Fluorometer:
    Пакет для пользователей, которые уже имеют систему LI‑6800, но нуждаются в 6800‑01A флуориметре или хотят специализированный флуориметр для водных исследований.

  • 6800‑18 Aquatic Chamber (stand‑alone):
    Камера для измерения фотосинтеза и дыхания в водных растворах, требующая наличия системы LI‑6800 и флуориметра 6800‑01A. Включает комплект запасных частей.

  • 9968‑338 Aquatic Chamber Adapter:
    Адаптер для расширения возможностей акватической камеры, предназначенный для образцов, таких как морские травы, макроалги, кораллы и мхи.


Технические характеристики (6800‑18 Aquatic Chamber)

  • Максимальная площадь листа (для сравнения с наземными измерениями): 36 см²
  • Внешние размеры:
    • Ширина: 11,5 см (от края до края)
    • Длина: 16,8 см (от передней до задней части)
    • Высота: 5,9 см (от нижней до верхней части камеры)
  • Вес: 0,35 кг

Рабочий кювет (Sample Cuvette)

  • Материалы (смываемые): 316 нержавеющая сталь, плавное стекло, Viton, PTFE, силикон, ацетал
  • Рабочий объём: 0 – 20 мЛ (рекомендуемый объём – 15 мЛ)

Газоанализатор CO₂

  • Принцип работы: Недисперсионная инфракрасная (NDIR) методика
  • Диапазон измерений: 0 – 3100 µmol mol⁻¹
  • Точность:
    • При 4-секундном усреднении при 400 µmol mol⁻¹: < 0.1 µmol mol⁻¹
    • При концентрациях >200 µmol mol⁻¹: 1% от показания
    • При концентрациях <200 µmol mol⁻¹: ±2 µmol mol⁻¹

Контроль CO₂

  • Диапазон: 0 – 2000 µmol mol⁻¹
  • Поддержка пользовательских газовых смесей через внешние фитинги

Флуориметр (6800‑01A)

  • Выход активного света (Red/Blue): 0 – 3000 µmol м⁻²·с⁻¹
  • Выход дальнего красного света: 0 – 20 µmol м⁻²·с⁻¹
  • Интенсивность насыщения: 0 – 16 000 µmol м⁻²·с⁻¹
  • Пиковые длины волн:
    • Красный: 625 нм
    • Синий: 475 нм
    • Дальний красный: 735 нм

Температура

  • Рабочая температура: 0 – 50 °C (без солнечной нагрузки, не замерзает)
  • Температура хранения: –20 – 60 °C (при чистой и сухой камере)
  • Контроль температуры: Использование внешнего водяного бака (соединения #10-32)

Операционная среда жидкости

  • Температура: От не замерзающей до 50 °C
  • Солёность: 0 – 35%

Дополнительные порты

  • pH: Порт для 12 мм диаметрового pH-зонда с герметичной O‑ring прокладкой и интегрированным усилителем (зонд на основе стеклянного электрода, BNC‑разъём)
  • Септы: Используются силиконово‑PTFE септы

Примечание: Все технические характеристики могут быть изменены без предварительного уведомления.


Дополнительные аксессуары и варианты заказа

Варианты комплектации LI‑6800 Portable Photosynthesis System

  • LI‑6800AQ: Система с акватической камерой для водных исследований (включает консоль, сенсорную голову, кабельный комплект, 6800‑01A флуориметр, 6800‑18 акватическую камеру, комплект запасных частей, источник питания, 2 батареи, силикагель, сода известь и баллоны CO₂).
  • 6800FAQ: Пакет, включающий 6800‑01A флуориметр и 6800‑18 акватическую камеру для пользователей, уже имеющих LI‑6800.
  • 6800‑18: Акватическая камера как отдельное устройство (требуется наличие LI‑6800 системы и флуориметра 6800‑01A).
  • 9968‑338: Адаптер для акватической камеры для работы с образцами, такими как морские травы, макроалги, кораллы и мхи.

Аксессуары

  • Расходные материалы:
    • 8-граммовые баллоны CO₂
    • Индикационные и неиндикационные сушки Drierite
    • Сода известь
    • Фильтры для входного воздуха
    • Силикагель Sorbead® Orange CHAMELEON®
  • Дополнительные аксессуары:
    • Литий‑ионные батареи
    • Зарядное устройство для батарей
    • Адаптер переменного тока
    • Ремень для переноски
    • Штатив, панорамная головка, монопод
    • Кабельная сборка для подключения сенсорной головы
    • Запасная химическая колонка
    • Набор для субвыборки газов
    • Адаптер для подключения внешнего баллона CO₂
    • Zero kit (набор для химического обнуления CO₂ или H₂O ИРИА)
    • Наборы апертур для Clear‑top камеры и флуориметра (размеры: 1×3 см, 2×3 см, 3×3 см для Clear‑top; 2 см² и 6 см² для флуориметра)
    • Кабель‑адаптер для подключения термопары
    • Конусовидный комплект для расширения объема камеры для иголок

Информация для заказа

  • Номера деталей:
    • Для акватической камеры и аксессуаров, см. онлайн‑каталог производителя (например, номера деталей для пакетов LI‑6800AQ, 6800FAQ, 6800‑18, 9968‑338 и т.д.).
  • Параметры заказа:
    • Выберите систему, которая соответствует вашим требованиям (полная система, система с акватической камерой, только камера и т.п.), и дополните её нужными аксессуарами.

Заключение

Система LI‑6800 Portable Photosynthesis System с акватической камерой 6800‑18 представляет собой высокоточное, расширяемое и универсальное решение для исследований фотосинтеза как в наземных, так и в водных условиях. Благодаря автоматизированному контролю основных переменных (CO₂, H₂O, температура, свет) и возможности одновременного измерения газообмена и флуоресценции хлорофилла, система позволяет получать данные, пригодные для публикаций, и открывает новые возможности в области фотобиологии.